Enviado por: Marioly Anneliese Müller Sobarzo | Participación: Profesor Encargado | Fecha envío: 17-01-2025 14:22:01 |
Validado por: Gladys Eliana Ayarza Ramírez | Cargo: Coordinadora Mención Morfofisiopatología | Fecha validación: 21-01-2025 16:09:23 |
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Código del Curso: TM07211 | |
Tipo de curso: Obligatorio | Línea Formativa: Especializada |
Créditos: 7 | Período: Primer Semestre año 2025 |
Horas Presenciales: 189 | Horas No Presenciales: 0 |
Requisitos: TM06208 |
# | Nombre | Función (Secciones) |
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1 | Marioly Anneliese Müller Sobarzo | Profesor Encargado (1) |
2 | Mayarling Francisca Troncoso Magñin | Profesor Coordinador (1) |
3 | Pablo Ignacio Cruz Nuñez | Profesor Coordinador (1) |
Los trabajos prácticos de laboratorio se llevaran a cabo mientras puedan realizarse actividades presenciales en los laboratorios de la Escuela de Tecnología Médica.
Conoce los fundamentos principales y las bases teóricas de la inmunohistoquímica y aplica los métodos básicos al diagnóstico clínico.
Evalúa las técnicas inmunohistoquímicas utilizadas en células y tejidos normales y patológicos para validar los resultados obtenidos.
Interpreta los resultados obtenidos de las técnicas inmunohistoquímicas en células y tejidos normales y patológicos para contribuir al diagnóstico clínico.
Indicadores de logros | Acciones asociadas |
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1) Clase teórica CT1: Métodos inmunoenzimáticos. Fundamentos moleculares. Inmunoperoxidasa, inmunofosfatasa, inmunometálicas CT2: Sistemas de amplificación de la señal. CT3: Procesamiento de muestras para estudio con técnicas inmunoenzimáticas. Fijación, inclusión, corte y medios de adhesión. Montaje de un laboratorio de inmunohistoquímica. Selección de insumos y equipos. CT4: Métodos de recuperación de reactividad de antígenos en tejidos fijados e incluidos en parafina. Reactivos, protocolos y equipamiento. CT5: Inmunohistoquímica y descalcificación de tejidos. Métodos de descalcificación y su efecto en los antígenos que se detectan con IHQ. Control de pérdida de reactividad por descalcificación. CT6: Patrones de inmunotinción e interpretación de inmunotinciones en técnicas inmunoenzimáticas 2) Seminarios y Trabajos prácticos: TP1-TP7
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Indicadores de logros | Acciones asociadas |
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1. Reconoce los fundamentos del método y los procedimientos para el análisis de tejidos y células 2. Ejecuta métodos que favorecen la preservación de antígenos en células y tejidos. |
Clases teóricas CT7: Inmunofluorescencia (IF), fundamentos moleculares. Procesamiento de muestras para IF Clase de aplicación 2 y seminario: Aplicaciones de la IF en patología renal. Clase de aplicación 7 y seminario: Aplicaciones de IF en la investigación de AD y melanoma. Clase de aplicación y seminario: aplicaciones de la IF en estudio de la biología del desarrollo.
Seminario 2 y Trabajos prácticos 8 a 11 |
Indicadores de logros | Acciones asociadas |
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Clases teóricas CT8: Antígenos de uso habitual en diagnóstico IHQ y sus actualizaciones. CT9: Diagnóstico y tipificación IHQ de carcinomas. CT10: Diagnóstico y tipificación IHQ de linfomas. CT11: IHQ en cáncer mamario. Clase de aplicación 1 y seminario: Aplicación de la IHQ en medicina forense Clase de aplicación 3 y seminario: IHQ en patología muscular. Clase de aplicación 4 y seminario: Marcadores de diagnóstico temprano para efectos a largo plazo producidos por insultos metabólicos al nacer Clase de aplicación 5 y seminario: Aplicación de IF e IHQ cromogénica en la investigación del síndrome de Sjögren. Clase de aplicación 6 y seminario: Aplicaciones de la IHQ en el estudio de ganglio centinela en cáncer Clase de aplicación y seminario: Aplicación de la IHQ en la investigación de neoplasias de la próstata.
Trabajos Prácticos y Casos clínicos |
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Examen teórico-práctico | Comprende un examen teórico-práctico obligatorio, que corresponde al desarrollo de la unidad integradora de casos clínicos. Que consta de una etapa práctica de carácter reprobatorio equivalente al 60% de la nota de examen final (NEF) y la etapa teórica de carácter reprobatorio que corresponde al 40% de la nota de examen final (NEF). La etapa teórica se evaluará mediante la presentación oral de los casos clínicos desarrollados y el informe final de la presentación de los casos clínicos y la práctica mediante la pauta de desempeño en el laboratorio y los resultados de sus láminas. Todas las calificaciones que ponderan el NEF de primera oportunidad son de carácter reprobatorio. |
Se incorporan contenidos que promuevan el uso de inteligencia artificial para el análisis y procesamiento de imágenes, potenciando la microscopía virtual. Se suma una instancia evaluativa práctica al curso que permite evaluar el desarrollo y avance en las competencias prácticas. Se suman además nuevos métodos de detección para la identificación de antígenos que permitan flexibilizar el uso de distintos cromógenos. El resto de las mejoras se centran en mejorar la coordinación del equipo de trabajo con el fin de gestionar de mejor manera el tiempo de dedicación de las revisiones de informes, pruebas y láminas, dando un feedback oportuno a través de la plataforma U test.
Las actividades obligatorias de IHQ aplicada son: Pruebas teóricas, Pruebas prácticas, Seminarios y Presentación de Casos. Además de los trabajos prácticos y las clases de aplicación. La unidad de casos clínicos también es obligatoria su asistencia y en caso de no poder asistir debe ser justificada y recuperada la actividad.
Para la asignatura de IHQ aplicada, las evaluaciones serán recuperadas mediante pruebas orales con una comisión integrada por al menos dos docentes o pruebas de desarrollo escritas. Estas pruebas corresponderán a la temática de la actividad no asistida, considerando un mayor grado de exigencia al realizado de forma ordinaria dentro de los tiempos establecidos.